東京海洋大学 海の研究戦略マネジメント機構 研究者総覧データベース

氏名

吉崎悟朗 

読み

YOSHIZAKI, Goro

役職

教授

TEL・FAX

E−mail

*研究者への技術相談等は、「海の相談室」をご利用ください。

ホームページ

http://www2.kaiyodai.ac.jp/~goro/

所属部門

海洋生物資源学部門

担当科目

（学部）動物発生学、水族生理学、水族生理学実験、水族養殖育種学実習Ⅰ
（大学院）動物発生工学

キーワード

遺伝子導入魚，始原生殖細胞，精原細胞，キメラ魚，卵母細胞，卵成熟，凍結保存，借り腹

研究テーマ・活動内容

１　魚類繁殖生理学
　特に卵母細胞の成熟機構および始原生殖細胞の決定・分化・増殖機構の解明

２　魚類発生工学
　魚類への外来遺伝子導入による新たな育種技法の開発・改良
　始原生殖細胞をベクター細胞とした遺伝子導入技法の開発
　始原生殖細胞の凍結保存による魚類の遺伝子資源保存法の開発
　始原生殖細胞を他魚種へ移植することによる借り腹養殖技法の開発

３　魚卵を用いた動物工場の開発
　ニジマス卵を用いた組換えタンパク質の生産技法の開発・改良

SDGsと関係する研究テーマ

研究と関係するSDGs項目

自己アピール

魚の養殖技術はこの数十年の間に飛躍的に進歩しました。しかし、養殖されている魚そのものは、遺伝的には野生の魚とほとんど変わりありません。畜産の世界では家畜化されたブタやウシを利用しており、その原種であるイノシシや野生のウシが畜産業に用いられることは、特殊な例を除いてありません。将来に向け、安全な養殖魚を持続的に生産し、さらには環境へのインパクトも考慮した養殖を行っていくためには、養殖により適した魚を作り上げていく、いわゆる品種改良が必要不可欠です。この品種改良を魚の養殖分野で効率的に、かつ確実に行っていくうえで、細胞操作・遺伝子操作という技術は非常に重要な道具となり得ます。
このような考えのもと、私は魚類の新しい品種改良技術を開発するために、魚類の細胞操作や遺伝子操作に関する研究を行っています。これらの技術を利用することで、将来は全く薬を使わないで生産した無農薬（水産薬）養殖魚や、健康に良い新たな機能を兼ね備えた養殖魚も作出できるものと期待しております。さらには遺伝子操作の技術を利用してイクラに医薬品を作らせる技術の開発も行っております。このような技術が実用化すれば、従来の養殖場が製薬工場になる日も近いと思われます。

技術相談対応分野

共同研究の希望課題

科研費等研究テーマ

■新学術領域研究（研究領域提案型）（平成２５年-）　
　サケ科魚類の進化に伴うGSC制御機構の変化（代表）

■新学術領域研究（平成２５年-）
　動物における配偶子産生システムの制御（分担）

■挑戦的萌芽研究（平成２８年-）　
　水産上有用種を用いた氷冷採卵法の構築-雌親魚を氷水に浸すと放卵する（代表）

■挑戦的萌芽研究（平成２８年-）
　水産魚種におけるF0ノックアウト技術の開発（分担）

■基盤研究(A)（平成２９年-）　
　魚類生殖幹細胞の凍結・移植による遺伝子資源の長期保存技法の開発（代表）

■基盤研究(A)（平成２８年-）　
　代理親魚技法を利用した新規交雑種作出技術の開発～優良交雑種を自然交配で生産する～（分担）

■基盤研究(A)（平成２６-２９年３月）
　魚類の育成環境適応性と環境負荷低減を考慮した養魚飼料の基礎的研究（分担）

■基盤研究(A)（平成２６-２９年３月）
　代理親魚技法を用いた遺伝的不妊魚の大量生産法の開発（代表）

■挑戦的萌芽研究（平成２５-２７年）　
　ニジマス代理親魚はサケの卵や精子を何度も生産できるのか？（代表）

■平成２４年度研究開発施設共用等促進費補助金　ナショナルバイオリソースプロジェクト：（平成２４-２６年）
　生殖細胞の凍結保存と借り腹生産による系統（代表）

■国家基幹研究開発推進事業　海洋資源利用促進技術開発プログラム　海洋生物資源確保技術高度化（平成２３年１０月-）
　生殖幹細胞操作によるクロマグロ等の新たな受精卵供給法の開発（代表）

■基盤B（平成２３-２６年）
　海産魚への脂肪酸代謝酵素遺伝子群の導入：植物油で魚を作る（代表）

■新学術領域研究（平成２１-２５年）
　サケ科魚類生殖腺GSC/ニッチ・システムを構成する細胞の同定と季節制御（代表）

■BRAIN　独立行政法人 農業・食品産業技術総合研究機構 生物系特定産業技術研究支援センター（平成２０-２４年）
　精原細胞移植を用いた代理親魚技法の構築：サバにマグロを生ませる（代表）

■(独）科学技術振興機構（平成２０-２２年）
　性的可塑性の分子メカニズムに関する研究（分担）

■独立行政法人水産総合研究センター（平成１９-２２年）
　新たな農林水産政策を推進する実用技術開発事業委託事業(マグロ)（分担）

■(独)科学技術振興機構（平成１７-１９年）
　魚類精原幹細胞株からの個体の作出

■(独)科学技術振興機構（平成１４-１７年）
　培養系での魚類始原生殖細胞からの個体創生技術の確立（代表）

■ＮＥＤＯ（平成１４−１６年）
　水産養殖工場を実現する工業型養殖技術の開発（分担）

■基盤Ｂ（平成１４−１５年）
　動物工場を用いた魚類生殖腺刺激ホルモンの大量生産（分担）

■基盤Ｂ（平成１４−１５年）
　魚類の始原生殖細胞の操作に関する細胞工学的研究（分担）

■奨励Ａ（平成１３−１４年）
　海産魚の育種を目指した遺伝子導入魚作出技法の開発（代表）

■農林水産技術会議「バイオデザイン計画」（平成１３−１５年）
　魚類始原生殖細胞の決定・増殖機構の解明（代表）

講演テーマ

１　遺伝子組換え魚の水産への応用
２　魚の卵で薬を作る
３　一粒の細胞から魚を作る

特記事項

氏名

吉崎悟朗 

読み

YOSHIZAKI, Goro

役職

教授

所属部門

海洋生物資源学部門

学歴

東京水産大学水産学部水産養殖学科 １９８８年３月卒業
東京水産大学大学院水産学研究科博士後期課程資源育成学専攻 １９９３年３月修了

経歴

１９９３年４月　米国テキサス工科大学・農学部・博士研究員
１９９５年１０月 東京水産大学・資源育成学科・助手
２００１年　平成１３年度日本水産学会奨励賞
受賞題目「魚類への外来遺伝子導入による新たな育種に関する研究」

学位

水産学博士（東京水産大学　１９９３年）

学位論文

魚類への外来遺伝子導入に関する基礎的研究

所属学会と役職など

日本水産学会、マリンバイオテクノロジー学会、日本水産増殖学会、日本繁殖生物学会、米国繁殖生理学会

社会活動

■国際協力事業団　養殖コース講師（平成２１年度まで）

受賞歴等

■平成29年度日本農学賞.「代理親魚技法の構築とその応用に関する研究」　日本農学会.　2017年4月.

■読売農学賞.「代理親魚技法の構築とその応用に関する研究」　読売新聞グループ本社.　2017年4月.

■Best Oral Presentation Award ETW 2016.「Germ cell manipulation in fish」　19th European Testis Workshop.　2016年6月.

■平成26年度日本水産学会賞.「代理親魚技法の構築とその応用に関する研究」　（社）日本水産学会.　2015年3月.

■2010年度ゴールド・メダル賞.「生殖細胞の異種間移植による代理親魚養殖技術の実用化」　東京テクノフォーラム.　2010年4月.

■平成21年度日本水産学会論文賞.「Artificially induced tetraploid masu salmon have the ability to form primordial germ cells」　社団法人　日本水産学会.　2010年3月.

■ベストプレゼンテーション賞.「魚類生殖細胞の性：精原細胞から卵を作る」　第３回生殖研究ワークショップ.　2008年8月.

■日本学術振興会賞　JSPS PRIZE.「生殖細胞移植による新たな魚類養殖技法の開発」　独）日本学術振興会.　2007年3月.

■若手農林水産研究者表彰.「生殖細胞の異種間移植を利用した魚類養殖法」　農林水産技術会議.　2006年2月.

■ﾏﾘﾝﾊﾞｲｵﾃｸﾉﾛｼﾞｰ学会賞岡見賞.「魚類生殖細胞を利用した新たな発生工学技術の開発」　（社）マリンバイオテクノロジー学会.　2005年5月.

■文部科学大臣表彰　若手科学者賞.「始原生殖細胞を用いた新たな魚類発生工学技術の研究」　文部科学省.　2005年4月.

■マリンバイオテクノロジー学会賞論文賞.　（社）マリンバイオテクノロジー学会.　2003年5月.

■日本農学進歩賞.「魚類の始原生殖細胞を利用した新たな発生工学技法の展開」　（財）農学会. 2002年11月.

■日本水産学会賞奨励賞.「魚類への外来遺伝子導入による新たな育種に関する研究」（社）日本水産学会. 2002年4月.

氏名

吉崎悟朗 

読み

YOSHIZAKI, Goro

役職

教授

所属部門

海洋生物資源学部門

主要論文

Masaomi Hamasaki, Yutaka Takeuchi, Ryosuke Yazawa, Souta Yoshikawa, Kazushi Kadomura, Toshiyuki Yamada, Kadoo Miyaki, Kiyoshi Kikuchi and Goro Yoshizaki. 2017.
Production of tiger puffer Takifugu rubripes offspring from triploid grass puffer Takifugu niphobles parents.
Marine Biotechnology in press.

Li Q, Fujii W, Naito K, Yoshizaki G. 2017.
Application of dead end-knockout zebrafish as recipients of germ cell transplantation.
Mol Reprod Dev. 84, 1100-1111.

Kensuke Ichida, Kazuyoshi Kise, Tetsuro Morita, Ryosuke Yazawa , Yutaka Takeuchi, Goro Yoshizaki. 2017.
Flow-cytometric enrichment of Pacific bluefin tuna type A spermatogonia based on light- scattering properties.
Theriogenology 101, 91-98.

Mana Sato, Makoto Hayashi, Goro Yoshizaki. 2017.
Stem cell activity of type A spermatogonia is seasonally regulated in rainbow trout.
Biol Reprod 96: 6, 1303-1316.

Seki S, Kusano K, Lee S, Iwasaki Y, Yagisawa M,Ishida M, Hiratsuka T, Sasado T, Naruse K, Yoshizaki G. 2017.
Production of the medaka derived from vitrified whole testes by germ cell transplantation.
Scientific Reports 7, 43185.

Hiroyuki Yoshikawa, Yutaka Takeuchi, Yasuko Ino, Junjie Wang, Gaku Iwata, Naoki Kabeya, Ryosuke Yazawa, Goro Yoshizaki. 2017.
Efficient production of donor-derived gametes from triploid recipients following intra-peritoneal germ cell transplantation into a marine teleost, Nibe croaker (Nibea mitsukurii).
Aquaculture 478, 35-47.

Yazawa R, Takeuchi Y, Satoh K, Machida Y, Amezawa K, Kabeya N, Yoshizaki G. 2017.
Spawning induction and seed production of Eastern little tuna, Euthynnus affinis (Cantor, 1849), in the post- and pre-spawning seasons by hormonal treatment in a semi-closed recirculation system with elevated temperature.
Aquaculture Research 48, 3472-3481.

R. Yazawa, Y. Takeuchi, K. Amezawa, K. Sato, G. Iwata, N. Kabeya, G. Yoshizaki. 2016.
GnRHa-induced spawning of the Eastern little tuna (Euthynnus affinis) in a 70-m3 land-based tank.
Aquaculture 442, 58-68.

N. Kabeya, Y. Takeuchi, R. Yazawa, Y. Haga, S. Satoh, G. Yoshizaki. 2016.
Transgenic modification of the n-3 HUFA biosynthetic pathway in nibe croaker larvae: improved DPA (docosapentaenoic acid; 22:5n-3) production.
Aquaculture Nutrition 22, 472-478.

Lee S, Katayama N, Yoshizaki G. 2016.
Generation of juvenile rainbow trout derived from cryopreserved whole ovaries by intraperitoneal transplantation of ovarian germ cells.
Biochem Biophys Res Commun. 478, 1478-1483.

Lee S, Iwasaki Y, Yoshizaki G. 2016.
Long-term (5 years) cryopreserved spermatogonia have high capacity to generate functional gametes via interspecies transplantation in salmonids.
Cryobiology 73, 286-290.

Boonanuntanasarn S, Bunlipatanon P, Ichida K, Yoohat K, Mengyu O, Detsathit S, Yazawa R, Yoshizaki G. 2016.
Characterization of a vasa homolog in the brown-marbled grouper (Epinephelus fuscoguttatus) and its expression in gonad and germ cells during larval development.
Fish Physiol Biochem. 42, 1621-1636.

Katayama N, Kume S, Hattori-Ihara S, Sadaie S, Hayashi M, Yoshizaki G.2016.
Germ Cell-Specific Excision of loxP-Flanked Transgenes in Rainbow Trout Oncorhynchus mykiss.
Biol Reprod. 94: 79, 1-11.

Yoshizaki G, Takashiba K, Shimamori S, Fujinuma K, Shikina S, Okutsu T, Kume S, Hayashi M. 2016.
Production of germ cell-deficient salmonids by dead end gene knockdown, and their use as recipients for germ cell transplantation.
Mol Reprod Dev. 83, 298-311.

Lee S, Yoshizaki G. 2016.
Successful cryopreservation of spermatogonia in critically endangered Manchurian trout (Brachymystax lenok).
Cryobiology 72, 165-168.

Bar I, Dutney L, Lee P, Yazawa R, Yoshizaki G, Takeuchi Y, Cummins S, Elizur A. 2015.
Small-scale capture, transport and tank adaptation of live, medium-sized Scombrids using "Tuna Tubes".
Springerplus vol.4.

Tomonori Kuwada, Testsuya Tokuhara, Munetaka Shimizu, Goro Yoshizaki. 2015.
Body size is the primary regulator affecting commencement of smolting in amago salmon Oncorhynchus masou ishikawae.
Fisheries Science 82, 59-71.

Seungki Lee, Shinsuke Seki, Naoto Katayama & Goro Yoshizaki. 2015.
Production of viable trout offspring derived from frozen whole fish.
Scientific reports vol.5.

N Kabeya, Y Yamamoto, SF Cummins, A Elizur, R Yazawa, Y Takeuchi, Y Haga, S Satoh, G Yoshizaki. 2015.
Polyunsaturated fatty acid metabolism in a marine teleost, Nibe croaker Nibea mitsukurii: Functional characterization of Fads2 desaturase and Elovl5 and Elovl4 elongases.
Comparative Biochemistry and Physiology Part B:
Biochemistry and Molecular Biology 188, 37-45.

Tetsuro Morita, Kagayaki Morishima, Misako Miwa, Naoki Kumakura, Satomi Kudo, Kensuke Ichida, Toru Mitsuboshi, Yutaka Takeuchi, and Goro Yoshizaki. 2015.
Functional sperm of the yellowtail (Seriola quinqueradiata) were produced in the small-bodied surrogate, jack mackerel (Trachurus japonicus)
Marine Biotechnology 17, 644-654.

Ido Bar, Andre, Smith, Erin Bubner, Goro Yoshizaki, Yutaka Takeuchi, Ryosuke Yazawa, Ben Nan Chen, cott Cummins, Abigail Elizur. 2015.
Assessment of yellowtail kingfish (Seriola lalandi) as a surrogate host for the production of Southern bluefin tuna (Thunnus maccoyii) seed via spermatogonial germ cell transplantation.
Reproduction,Fertility and Development 28, 2051-2064.

Ryosuke Yazawa, Yutaka Takeuchi, Kenta Satoh, Yuri Machida, Kotaro Amezawa, Naoki Kabeya, Yukinori Shimada, Goro Yoshizaki. 2015.
Eastern little tuna, Euthynnus affinis (Cantor, 1849) mature and reproduce within 1 year of rearing in land-based tanks.
Aquaculture Research 47, 3800-3810.

T. Okutsu, S. Shikina, T. Sakamoto, M. Mochizuki, and *G. Yoshizaki. 2015.
Successful production of functional Y eggs derived from spermatogonia transplanted into female recipients and subsequent production of YY supermales in rainbowtrout, Oncorhynchus mykiss.
Aquaculture 446, 298-302.

JA. Fernandez, EJ. Bubner, Y. Takeuchi, *G. Yoshizaki, T. Wang, SF. Cummins, A. Elizur. 2015.
Primordial germ cell migration in the yellowtail kingfish (Seriola lalandi) and identification of stromal cell-derived factor 1.
Gen Comp Endocrinol. 213, 16-23.

R. Yazawa, Y. Takeuchi, K. Amezawa, K. Sato, G. Iwata, N. Kabeya, *G. Yoshizaki. 2015.
GnRHa-induced spawning of the Eastern little tuna (Euthynnus affinis) in a 70-m3 land-based tank.
Aquaculture 442, 58-68.

S. Boonanuntanasarn, A. Jangprai, *G. Yoshizaki. 2015.
Characterization of proopiomelanocortin in the snakeskin gourami (Trichopodus pectoralis) and its expression in relation to food intake.
Domest Anim Endocrinol. 50, 1-13.

N Kabeya, Y Takeuchi, R Yazawa, Y Haga, S Satoh, G Yoshizaki. 2015.
Transgenic modification of the n-3 HUFA biosynthetic pathway in nibe croaker larvae: improved DPA (docosapentaenoic acid; 22:5n-3) production.
Aquaculture Nutrition 22, 472-478.

S Kume, N Katayama, K Ichida, S Hattori-Ihara, K Nagasawa, G Yoshizaki. 2014.
Transgene manipulation in rainbow trout using Cre recombinase.
Fisheries Science 80, 767-773.

M Hayashi, M Sato, Y Nagasaka, S Sadaie, S Kobayashi, G Yoshizaki. 2014.
Enrichment of Spermatogonial Stem Cells Using Side Population in Teleost.
Biol Reprod. 91, 1-8.

S. Nakajima, M. Hayashi, T. Kouguchi, K. Yamaguchi, M. Miwa, G. Yoshizaki. 2014.
Expression patterns of gdnf and gfra1 in rainbow trout testis
Gene Expression Patterns 14, 111-120.

W. Makkapan, G. Yoshizaki, M. Tashiro, W. Chotigeat. 2014.
Expression profile of ribosomal protein L10a throughout gonadal development
Fish Physiology and Biochemistry 40, 1069-1081.

M. Sato, T. Morita, N. Katayama, G. Yoshizaki. 2014.
Production of genetically diversified fish seeds using spermatogonial transplantation
Aquaculture 422-423, 218-224

N. Kabeya, Y. Takeuchi, Y. Yamamoto, R. Yazawa, Y. Haga, S. Satoh, G. Yoshizaki. 2014.
Modification of the n-3 HUFA biosynthetic pathway by transgenesis in a marine teleost, nibe croaker.
Journal of Biotechnology 172,46-54

R. Farlora, S. Hattori-Ihara, Y. Takeuchi, M. Hayashi, A. Octavera, Alimuddin, G. Yoshizaki. 2013.
Intraperitoneal germ cell transplantation in the nile tilapia oreochromis niloticus.
Marine Biotechnology 16, 309-320.

R. Yazawa, Y. Takeuchi, T. Morita, M. Ishida, G. Yoshizaki. 2013.
The pacific bluefin tuna (Thunnus orientalis) dead end gene is suitable as a specific molecular marker of type A spermatogonia.
Molecular Reproduction and Development 871-880.

S. Shikina, K. Nagasawa, M. Hayashi, M. Furuya, Y. Iwasaki, and G. Yoshizaki. 2013.
Short-term in vitro culturing improves transplantability of type A spermatogonia in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).
Molecular Reproduction and Development 80, 763-773.

S. Lee, Y. Iwasaki, S. Shikina, G. Yoshizaki. 2013.
Generation of functional eggs and sperm from cryopreserved whole testes.
Proceedings of the National Academy of Sciencesof the United States of America　110, 1640-1645.

M. Hamasaki, Y. Takeuchi, K. Miyaki, G. Yoshizaki. 2013.
Gonadal development and fertility of triploid grass puffer Takifugu niphobles induced by cold shock treatment.
Marine Biotechnology　15, 133-144.

K. Nagasawa, JM. Fernandes, G. Yoshizaki, M. Miwa, I. Babiak. 2013.
Identification and migration of primordial germ cells in Atlantic salmon, Salmo salar: Characterization of vasa, dead end, and lymphocyte antigen 75 genes.
Molecular Reproduction and Development 80, 118-131.

SMSN. Lacerda, GMJ. Costa, PHA. Campos-Junior, TM. Segatelli, R. Yazawa, Y. Takeuchi, T. Morita, G. Yoshizaki, LR. Franca.
Germ Cell Transplantation as a Potential Biotechnological Approach to Fish Reproduction
Fish Physiology and Biochemistry 39, 3-11.

M. Hamasaki, Y. Takeuchi, K. Miyaki, G. Yoshizaki. 2013.
Gonadal Development and Fertility of Triploid Grass Puffer Takifugu niphobles Induced by Cold Shock Treatment.
Mar. Biotechnol.　Vol.15(2),133-144.

K. Nagasawa, J.M. Fernandes, G. Yoshizaki, M. Miwa, I. Babiak. 2013.
Identification and migration of primordial germ cells in Atlantic salmon, Salmo salar: Characterization of vasa, dead end, and lymphocyte antigen 75 genes.
Mol Reprod Dev.　Vol.80(2), 118-131.

M. Hayashi, M. Sato, Y. Iwasaki, M. Terasawa, M. Tashiro, S. Yokoyama, N. Katayama, S. Sadaie, M. Miwa, G. Yoshizaki. 2012.
Combining next-generation sequencing with microarray for transcriptome analysis in rainbow trout gonads.
Mol. Reprod. Dev.　Vol.79, 870-878.

K. Tsukamoto, F. Miura, N.T. Fujito, G. Yoshizaki, and M. Nonaka. 2012.
Long-lived dichotomous lineages of the proteasome subunit beta type 8 (PSMB8) gene surviving more than 500 million years as alleles or paralogs.
Molecular Biology and Evolution　Vol.29, 3071-3079.

H. Endo, T. Muramatsu, G. Yoshizaki, H. Ren, H. Ohnuki. 2012.
Development of a label-free immunosensor system for detecting oocyte maturation-inducing hormone in fish.
Fish. Sci.　Vol.78, 391-398.

K. Kise, H. Yoshikawa, M. Sato, M. Tashiro, R. Yazawa, Y. Takeuchi, and G. Yoshizaki. 2012.
Flow-cytometric isolation and enrichment of teleost type-A spermatogonia based on light-scattering properties.
Biology of Reproduction　Vol. 86(4):107.

T. Morita, N. Kumakura, K. Morishima, T. Mitsuboshi, M. Ishida, T. Hara, S. Kudo, M. Miwa, S. Ihara, K. Higuchi, Y. Takeuchi, and G. Yoshzaki.
Production of donor-derived offspring by allogeneic transplantation of spermatogonia in the yellowtail (Seriola quinqueradiata).
Biology of Reproduction　Vol.86(6)：176, 1-11.

K. Nagasawa, M. Miwa, R. Yazawa, T. Morita, Y. Takeuchi, and G. Yoshizaki. 2012.
Characterization of lymphocyte antigen 75 (Ly75/CD205) as a potential cell-surface marker on spermatogonia in Pacific bluefin tuna Thunnus orientalis.
Fish. Sci.　Vol.78, 791-800.

SMSN. Lacerda, GMJ. Costa, PHA. Campos-Junior, TM. Segatelli, R. Yazawa, Y. Takeuchi, T. Morita, G. Yoshizaki, LR. França.
Germ Cell Transplantation as a Potential Biotechnological Approach to Fish Reproduction.
Fish Physiology and Biochemistry　in press.

J. Aizen, M. Kobayashi, I. Selicharova, YC Sohn, G. Yoshizaki, B. Levavi-Sivan. 2012.
Steroidogenic response of carp ovaries to piscine FSH and LH depends on the reproductive phase.
Gen. Comp. Endocrinol.　Vol. 178, 28-36.

G. Yoshizaki, T. Okutsu, T. Morita, M. Terasawa, R. Yazawa, and Y. Takeuchi. 2012.
Biological characteristics of fish germ cells and their application to developmental biotechnology.
Reproduction in Domestic Animals　Vol.47, Suppl.4, 187-192.

N. Phumyu, S. Boonanuntanasarn, A. Jangpria, G. Yoshizaki, U. Na-Nakorn. 2012.
Pubertal effects of 17α-methyltestosterone on GH-IGF-related genes of the hypothalamic-pituitary-liver-gonadal axis and other biological parameters in male, female and sex-reversed Nile tilapia.
Gen. Comp. Endocrinol.　Vol.177, 278-292.

S. Booanuntanasarn, A. Jangprai, G. Yoshizaki. 2012.
Characterization of neuropeptide Y in snakeskin gourami and the change in its expression due to feeding status and melanocortin 4 receptor expression.
Gen. Comp. Endocrinol. Vol.179, 184-195.

G. Yoshizaki, K. Fujinuma, Y. Iwasaki, T. Okutsu,S. Shikina, R. Yazawa, Y. Takeuchi. 2011.
Spermatogonial transplantation in fish: a novel method for the preservation of genetic resources.
Comp. Biochem. Physiol. Part D Genomics Proteomics.　Vol.6,55-61.

K. Higuchi, Y. Takeuchi, M. Miwa, Y. Yamamoto, K. Tsunemoto, G. Yoshizaki. 2011.
Colonization, proliferation, and survival of intraperitoneally transplanted yellowtail Seriola quinqueradiata spermatogonia in nibe croaker Nibea Mitsukurii recipient.
Fish. Sci.　Vol.77,69-77.

Nagler JJ, Cavileer T, Hunter S, Drew R, Okutsu T, Sakamoto T, Yoshizaki G. 2011.
Non-sex specific genes associated with the secondary mitotic period of primordial germ cell proliferation in the gonads of embryonic rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).
Mol. Reprod. Dev.　Vol.78,181-187.

森田哲朗・吉崎悟朗. 2011.
ニジマス初期胚を利用したヒトα1-アンチトリプシンの生産. 水産育種　Vol.40,113-120.

Md. Al-Amin Sarker, Y. Yamamoto, Y. Haga, Md. Shah Alam Sarker, M. Miwa, G. Yoshizaki and S. Satoh. 2011.
Influences of low salinity and dietary fatty acids on fatty acid composition and fatty acid desaturase and elongase expression in red sea bream Pagrus major.
Fish. Sci.　Vol.77, 385-396.

R. Yazawa, Y. Takeuchi, K. Higuchi, T. Yatabe, N. Kabeya, and G. Yoshizaki. 2010.
Chub mackerel gonads support colonization, survival, and proliferation of intraperitoneally transplanted xenogenic germ cells. Biology of Reproduction Vol.82,896-904.

Y. Yamamoto, N. Kabeya, Y. Takeuchi, Alimuddin, Y. Haga S. Satoh, T. Takeuchi, G. Yoshizaki. 2010.
Cloning and nutritional regulation of polyunsaturated fatty acid desaturase and elongase of the marine teleost nibe croaker, Nibea mitsukurii.
Fisheries Science　Vol.76,463-472.

M. Kobayashi, Y. Hayakawa, W. Park, A. Banba, G. Yoshizaki, K. Kumamaru, H. Kagawa, H. Kaki, H. Nagaya, YC. Sohn. 2010.
Production of recombinant Japanese eel gonadotropins by baculovirus in silkworm larvae.
Gen. Comp. Endocrinol.　Vol.167,379-386.

G. Yoshizaki, M. Ichikawa, M. Hayashi, Y. Iwasaki, M. Miwa, S. Shikina, and T. Okutsu. 2010.
Sexual plasticity of ovarian germ cells in rainbow trout.
Development　Vol.137,1227-1230.

壁谷尚樹・奥津智之・矢澤良輔・樋口健太郎・長澤一衛・三森亮介・中田久・濱崎将臣・竹内裕・吉崎悟朗. 2010.
サバ科魚類vasa cDNAのクローニングおよびその配列多型を利用したPCRによるクロマグロ生殖細胞検出系の構築.
水産育種　Vol.39, 115-126.

S. Shikina, G. Yoshizaki. 2010.
Improved in vitro-culture conditions to enhance the survival, mitotic activity and transplantability of rainbow trout type A spermatogonia. Biol. Reprod. Vol.83,268-276.

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■竹内俊夫、中田英昭、和田時夫、上田宏、有元貴文、渡部終五、中前明、橋本牧、吉崎悟朗　他,2016. 「5.8.3　新しい水産生物育種技術」　水産海洋ハンドブック　第３版　生物研究社,pp.405-408.

■竹内俊夫、中田英昭、和田時夫、上田宏、有元貴文、渡部終五、中前明、橋本牧、吉崎悟朗　他,2016. 「5.5.1　淡水魚類」　水産海洋ハンドブック　第３版　生物研究社,pp.322-324.

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「14. Germ Cell Transplantation in Fish: Basic Biology and Biotechnological Applications.」
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「Production of recombinant fish gonadotropins by baculovirus in silkworm larvae and their in vivo biological.」Aquaculture Research Progress　　　Nova Science Publishers, Inc.,pp.11-21.

■吉崎悟朗,2010. 「第6章　水産物の安定供給を目的とした技術開発」　シリーズ２１世紀の農学　世界の食料・日本の食料　 日本農学会編　養賢堂,pp.101-116.

■森田哲朗・吉崎悟朗・小林牧人・渡部終五・竹内俊郎,2007. 「ニジマス受精卵を用いたヒトのタンパク質生産技術の開発」バイオプロセスハンドブック　バイオケミカルエンジニアリングの基礎から有用物質生産・環境調和技術まで. NTS, pp.485-489.

■吉崎悟朗・竹内裕・奥津智之,2007. 「第５章　単離生殖細胞からの魚類個体の作出：細胞を介した遺伝子導入技法の樹立をめざして」. シリーズ２１世紀の農学　動物・微生物の遺伝子工学研究. 養賢堂,pp.77-95.

■吉崎悟朗,2006. 「サケからマスをつくる：始原生殖細胞を用いた魚類の発生工学」. いざ生の扉へ:クローンとエピジェネティクスの新展開. アドスリー,pp.123-144.


■吉崎悟朗,2002.魚類の遺伝子操作「動物発生工学」（岩倉洋一郎、佐藤英明、舘鄰、東條
英昭　編）,朝倉書店.

■Takeuchi,Y.,Yoshizaki,G.,Tominaga,H.,Kobayashi,T.,and Takeuchi,T.2001.
「Viasualization and isolation of live primordial germ cells aimed at cell-
mediated gene transfer in rainbow trout.」 In Aquatic Genomics(Eds. By
Shimizu and Aoki), Springer

■吉崎悟朗,2000.トランスジェニック技法の水産育種への応用.（次世代の水産バイオテ
クノロジー.隆島編）.成山堂書店,東京,pp.72-85.

■吉崎悟朗・隆島史夫,1997.遺伝子導入魚の作出と外来遺伝子の発現「魚類のDNA」
（青木・隆島・平野編）恒常星社厚生閣,東京,pp80-98.

■吉崎悟朗・R.Patino・隆島史夫,1997.コネクシン（ギャップ結合タンパク質）遺伝子
「魚類のDNA」（青木・隆島・平野編）恒星社厚生閣,東京,pp379-390.

氏名

吉崎悟朗 

読み

YOSHIZAKI, Goro

役職

教授

所属部門

海洋生物資源学部門

研究室紹介

■研究室ＨＰ
http://www2.kaiyodai.ac.jp/~goro/


■主な研究内容

研究①　「生殖細胞の異種間移植による代理親魚養殖技術の開発。」
この技術により、近い将来マグロを生むサバを作り出すことができそうです。すでにヤマメにニジマスの卵と精子を生産させ、ヤマメ両親を交配することで次世代でニジマスのみを生産することに成功しています。


研究②　「液体窒素の中で凍結保存した生殖細胞を宿主に移植することで、凍結細胞に由来する卵や精子を生産する技術の開発。」
絶滅しそうな魚から生殖細胞を取り出して凍結保存しておけば、もしその魚が絶滅しても、近縁の魚を代理親魚に用いることで、絶滅種を復活させることが可能です。

研究③　「生殖細胞を試験管内で無限に増殖させる技術の開発。」
この技法が確立すれば、試験管内の細胞からサバを代理親魚としてマグロを作り出すことや、胚性幹細胞（ES細胞）の代用として利用することが可能です。

研究④　「魚類の配偶子がどのようなホルモンや遺伝子の制御により成熟するのか？」
という問いに答えるべく、試験管内で精原細胞や卵母細胞を培養するシステムを利用し、分子、細胞レベルでの研究を行っています。

研究⑤　「脂肪酸代謝酵素の遺伝子を魚類へと導入することで、EPAやDHAを自力で生産できる海産魚の作出を目指しています。」
これが可能になれば、餌中に加えなければならない魚油を植物油に代替することが可能になり、より持続的かつ安全な養殖が実現できると期待されます。

卒研希望者等へのメッセージ

受験生へのメッセージ